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纯中药复方消癌根抗癌研究及机理初探

2012-2-21 11:37| 发布者: dcy| 查看: 2810| 评论: 0

摘要: 张绪慧 陈达理 董小锋(南方医科大学 广州510515)第一部分:纯中药复方消癌根对肿瘤生长的影响 材料与方法 一、 实验动物 昆明种小鼠60只,4-6周龄,体重18-22g,雄性,购自南方医科大学动物中心。试验前分笼饲养适 ...
张绪慧  陈达理  董小锋(南方医科大学  广州510515)

第一部分:纯中药复方消癌根对肿瘤生长的影响
材料与方法
一、 实验动物
昆明种小鼠60只,4-6周龄,体重18-22g,雄性,购自南方医科大学动物中心。试验前分笼饲养适应环境1周,试验过程中动物自由摄食、饮水、鼠房保持通风,室温保持在25±2℃,光照周期12/12小时。
二、 细胞株
细胞株为小鼠腹水型肝癌细胞株S180细胞,皮下接种可生成肉瘤。购于中山医科大学肿瘤研究所,常规复苏传代培养。
三、 主要药物、试剂和仪器
纯中药复方消癌根,由董草原医生提供。
环磷酰胺,江苏恒瑞医药股份有限公司生产,批号02071121。
四、 消癌根药液的制备
消癌根是由纯中药粉碎而得的黑褐色药粉。根据人与小鼠药物剂量换算公式:d小鼠=d人×(k小鼠、/k人),k小鼠、k人分别为小鼠和人的折算系数)算出小鼠每日给药剂量。取体重为50kg正常成人每日口服消癌根剂量为9g,算得小鼠每日给药低剂量,再将其剂量增加一倍设为高剂量;然后算出药液所要浓度。用蒸馏水将消癌根分别配成每毫升含0.10g、0.05g生药的高、低两个剂量组的悬浊液,4℃冰箱保存,用时摇匀。
用无菌生理盐水将环磷酰胺稀释成为2mg/ml, 4℃冰箱保存。
五、 荷瘤小鼠模型的建立
体外复苏培养S180细胞:将S180细胞培养于含体积分数为10%小牛血精的RPMI-1640营养液(含青霉素100×103U/L和链霉素100mg/L)中,置于37℃、含5%CO2的培养箱内。该细胞呈贴壁生长,取指数生长期的细胞,用0.5%胰蛋白酶消化,机械吹打成细胞悬液,PBS洗涤2次,2000r/min离心5min,弃上清液,用无菌生理盐水稀释,调整到2-3×106/ml个瘤细胞,随机先取5只健康昆明种小鼠,每只用上述细胞悬液0.4ml腹腔注射,注意观察接种小鼠腹水生长情况,约一周后接种小鼠腹部显显涨大、凸出。将其颈椎脱白处死,固定于蜡板上,无菌抽取乳白色腹水液,以0.9%氯化钠溶液1:1稀释,经0.2%台盼兰染色后计算活细胞数>95%,调整瘤细胞悬液浓度为6×106/ml个瘤细胞,每只小鼠右后肢臂部皮下接种0.2ml。共接种44只小鼠。24小时后用药。
六、 实验分组和给药
将44只造模成功的小鼠随机分为4组,每组11只,组内编号。4组分别为:消癌根高剂量组、消癌根低剂量组、阴性对照组及环磷酰胺组。所有处理自造模第二天开始:消癌根高、低剂量组分别按24g•kg-1•d-1•2g•kg-1•d-腹腔注射。连续用药15天后停药,处死小鼠,剥离瘤块,用滤纸吸干后,称取瘤重。
七、 评定指标
(1) 肿瘤抑制百分率(抑瘤率):
抑瘤率(%)=阴性对照组平均瘤重-治疗组平均瘤重×100%
                          阴性对照组平均瘤重
(2)给药期间,每隔三天用游标卡尺由体外测出瘤体的长径和短径,然后根据体积=长径×短径2,绘出肿瘤生长图。
八、 统计学处理

实验结果用均数±标准差(X±s)表示,实验资料采用SPSS10.0统计软件包处理。
结果

一、 瘤重和抑瘤率
消癌根对S180移植性肿瘤的抑制作用。如表1所示,消癌根高剂量组和消癌根低剂量组与阴性对照组比较,其瘤重均显著减轻(P<0.05=;消癌根高剂量组的瘤重与消癌根低剂量比较亦明显减轻(P<0.05=;消癌根高剂量组与环磷酰胺组比较其瘤重有显著性差异(P<0.05=);环磷酰胺组抑瘤率最高。
表1  消癌根对S180移植性肿瘤的抑制作用(x±s)
组别 n 瘤重 抑瘤率
  始               末 (g) (%)
阴性对照组 11                   11 8.01±1.15 —
环磷酰胺组 11                   11  4.36±0.75* 45.6
消癌根高剂量组 11                   11  5.19±0.73*▲△ 35.2
消癌根低剂量组 11                   11  6.24±1.15* 22.1
注:与阴性对照组比较:*P<0.05
与消癌根低剂量组比较:▲P<0.05
与环磷酰胺组比较:△P<0.05

二、 肿瘤的生成曲线
以时间为横轴,肿瘤体积为纵轴绘制肿瘤的生长曲线。
图1  瘤块生长曲线
讨论
一、 小鼠腹水型肝癌细胞株S180细胞的选择
国内研究者对S180生物学特性、免疫学、细胞系的建立及移植实验条件等方面做了较为深入的研究。由于其造模时间短、接种成功率高的特点,均一性好,目前此模型已广泛地用于肿瘤基础研究及药物筛选,成为研究中医药抗肿瘤的作用及机制的一个公认的肿瘤模型。
本实验采用购自中山医科大学肿瘤研究所的S180细胞,进行小鼠皮下肿瘤造模。经过对S180细胞复苏,传代,右后肢臂部皮下接种,成功地造出44只荷瘤小鼠,造模成功率达100%。这一模型具有明显外部特征,容易观察、测量皮下瘤块的生长情况,以后映出各实验组的药效。另外,本实验中的荷瘤小鼠皮下肿瘤易剥离,以便较为精确地称重、计算抑瘤率。

二、 消癌根对肿瘤的抑制作用
消癌根是董草原医生历经30多年研究探索、临床应用总结出来的纯中药方剂。大量临床实践证明该方治疗肿瘤有效,但尚未做有关消癌根实验研究、机理探讨方面的试验。本实验拟考察消癌根的抗肿瘤效果,以S180荷瘤小鼠为实验对象,将环磷酰胺设为阳性对照药,生理盐水组作为阴性对照组进行操作。环磷酰胺是临床常用的化疗药,其能有效地杀伤癌细胞(本实验其抑瘤率达到45.6%)。药效方面,消癌根高剂量组抑瘤率达到35.2%,消癌根低剂量组亦达到22.1%,消癌根高剂量组平均瘤重与低剂量组平均瘤重存在显著性差异〔P<0.05=〕。这说明消癌根在抗肿瘤方面有一定疗效,并且存在着一定的量效趋势。
消癌根的抗肿癌机理可能是通过抑制捐资血管生成来实现的。将在以下部分实验中予以探讨。

第二部分:纯中药夏方消癌根对肿瘤血管的影响
材料与方法
一、 实验动物
昆明种小鼠60只,4-6周龄,体重18-22g,雄性,购于南方医科大学动物中心。分笼饲养,自由摄食、饮水,鼠房保持通风。
二、 细胞株
   细胞株为小鼠腹水型肝癌细胞株A180细胞,皮下接种可生成肉瘤。购于中山医科大学肿瘤研究所,常规复苏传代培养。
三、 主要药物、试剂和仪器
   纯中药复方消癌根,由董草原医生提供。
   环磷酰胺,江苏恒瑞医药股份有限公司生产,批号02071121。
   PCNA一抗        武汉博士德生物工程有限公司产品
   VEGP一抗        武汉博士德生物工程有限公司产品
  生物素化兔抗山羊二抗试剂盒    武汉博士德物工程有限公司产品
  试剂盒中内容:
  H2O2浓缩液                                 4ml
  封闭液Ⅰ                  既用型          4ml
  封闭液Ⅱ                  既用型          4ml
  生物素化兔抗山羊IgG      既用型          4ml
  抗原冷修复液              既用型          4ml
DAB显色剂试剂盒   武汉博士德生物工程有限公司产品试剂盒中内容:
显色剂A      DAB×20        3ml
显色剂B      H2O2×20        3ml
显色剂C      TBS×20        3ml
四、 主要溶液的配制:
0.01MPBS缓冲液(PH7.2-7.4):1000双蒸水中,加氯化钠9g,NaH2PO4•12H2O 6g,NaH2PO4•2H20  0.4g,调整PH值至7.2-7.4
0.1M枸椽酸缓冲液(PH6.0):1000ml双蒸水中加枸椽酸三钠(C6H5Na3O7•2H2)3g,枸椽酸(C6H8O7•H2O)0.4g。调PH至6.0。
3%H2O2甲醇或0.01MPBS,97ml加入3ml市售的30%H2O2既得3%H2O2。
五、 消癌根药液的制备(同第一部分)
六、 荷瘤小鼠模型的建立(同第一部分)
七、 实验分组和给药(同第一部分)
连续用药15天后停药,处死小鼠后剥离瘤块,10%甲醛固定。
八、 取材的处理(固定、脱水、浸蜡、包蜡、切片)
组织块在甲醛里固定6个小时后取出用流水冲洗,滤纸吸去多余水分。注意遵守以下原则:(1)取材时避开瘤体中央液化坏死区,避免在瘤体外周取材,取材部位应介于两者之间。(2)从剥离瘤体、切取组织块到投入固定液,要尽量迅速,以尽量保持材料的新鲜,一般在1分钟内把组织块浸入固定液。(3)所用的固定液及容器必须预冷,以降低离体细胞内水解酶的活性,尽可能减少细胞自溶。(4)切割组织的刀必须锋利干净,操作时必须避免拉、锯、压等动作以免造成细胞损伤。
1. 脱水和包埋:
70%乙醇                 4℃              1h
80%醇                   4℃              1h
90%乙醇                 4℃              1h
95%乙醇                 4℃              1h
100%乙醇Ⅰ              4℃              30min
100%乙醇Ⅱ              4℃              30min
100%乙醇Ⅲ              4℃              30min
二甲苯Ⅰ                4℃              30min
二甲苯Ⅱ                4℃              30min
二甲苯Ⅲ                4℃              30min
石蜡Ⅰ                  4℃              30min
石蜡Ⅱ                  4℃              30min
石蜡Ⅲ                  4℃              30min
石蜡Ⅳ                  4℃              30min
包蜡                    <60℃
2. 切片前载玻片涂粘附剂:将待涂载玻片放在玻片架上浸入粘片剂APES与丙酮混合液(比例:1:50)中,常温下晾干备用。
3. 切片:厚度一般在4-6μm。
烤片:切片附粘后置60℃
保存:备用切片置4℃冰箱中保存。
九、 免疫组化染色
1. 石蜡切片常规脱蜡至水
二甲苯Ⅰ                         50min
二甲苯Ⅱ                         50min
二甲苯Ⅲ                         50min
无水乙醇Ⅰ                       1min
无水乙醇Ⅱ                       1min
95%酒精                          30s
90%酒精                          30s
80%酒精                          30s
2.30%H2O2加蒸馏水10份混合,室温10min(10min-1h)以灭活内源性过氧化物酶活性,蒸馏水洗2min×3次
3.热修复抗原:将切片放入盛有枸椽酸盐缓冲液(工作液)的容器中,置微波炉内加热使容器内液体温度保持在92℃-98℃之间并持续10-15分钟。取出容器,室温冷却10-21min,蒸馏水冲洗2次,PBS洗2×3min。
4. 抗原修复液Ⅰ:滴加在切片上室温5-10 min后,PBS洗2×3min。
5. 滴加正常山羊血清封闭液,室温30min,甩去多余液体,不洗。
6. 滴加PCNA/VEGF一抗,37℃孵育1h左右,或4℃过夜,PBS洗,3×5min。
7. 滴加生物素化二抗,37℃20 min,PBS洗,3×5min。
8. 滴加试剂SABC,37℃20 min,PBS洗,4×5min。
9. DAB显色:取1ml蒸馏水,加试剂盒中A、B、C试剂各一滴,混匀后加至切片。室温显色,控制反应时间,一般5-30min(视显色的具体情况而定),蒸馏水洗涤。3×5min。
10.苏木素轻度复染,约60s。
11.中性树胶封片。设阴性对照切片,用PBS代替特异性第一抗体。
十、 HE染色
染色方法:
二甲苯Ⅱ                         50min
二甲苯Ⅲ                         50min
无水乙醇Ⅰ                       1min
无水乙醇Ⅱ                       1min
95%酒精                          30s
90%酒精                          30s
80%酒精                          30s
苏木清                          10min(蒸馏水洗数秒)
1%盐酸酒精分化                  20s
流水冲洗(返蓝)                5min
伊红                            1min30s
90%酒精                          30s
95%酒精                          30s
无水乙醇Ⅰ                       5min
无水乙醇Ⅱ                       5min
无水乙醇Ⅲ                       5min
二甲苯石炭酸                     5min
二甲苯Ⅰ                         5min
二甲苯Ⅱ                         5min
十一、结果判断
1. 肿瘤内微血管计数(microvesseldensitycount,MDC):于每只荷瘤小鼠瘤体内的5个不同部位取材,每块5mm×5mm×2mm,排除肿瘤出血区及边缘反应区。应用HE染色,低倍镜(×40)观察确定每例切片中3个血管计数最高区域,然后在高倍镜(×100)下记数热点区域(hotspots)内每高倍镜视野的MDC,为了避免较大血管对计数的干扰,对管壁有较厚平滑肌包绕或管腔>8个细胞面积的血管不予计数。其平均值即为该例肿瘤的MDC值。
2. PCNA的阳性判断标准,细胞核染成棕黄色或棕褐色为阳性反应,每个标本随机观察10个高倍镜视野(×100),计算每个高倍镜视野100个肿瘤细胞中的阳性细胞数,取其平均值作为PCNA的阳性细胞数。VEGF以细胞浆内出现棕黄色为阳性,算阳性区域面积占瘤细胞总面积的百分率表示。
结果
一、 消癌根对肿瘤组织微血管计数(MDC)的影响
如表2所示:与阴性组相比较,消癌根高剂量组和消癌根低剂量组的MDC均明显降低(P<0.05=)。而环磷酰胺组的MDC与阴性对照组比较无显著性差异(P<0.05)。消癌根高剂量的MDC明显低于消癌根低剂量组的MDC(P<0.05)。
表2  消癌根对肿瘤组织微血管密度(MDC)的影响(x±s)
组别 n 剂量 MDC
  始               末 (g/kg) (条)
阴性对照组 11                    11  — 15.7±1.4
环磷酰胺组 11                    11 20 14.8±1.7
消癌根高剂量组 11                    11 24 5.6±1.7*▲
消癌根低剂量组 11                    11 12 8.2±4.6*
注:与阴性对照组比较:*P<0.05
与消癌根低剂量组比较:▲P<0.05
二、 消癌根对肿瘤组织血管内皮生长因子(VEGF)的影响
对于VEGF的表达,消癌根剂量组织和消癌根低剂量组均显著弱于阴性对照组(P<0.05)。消癌根高剂量组和消癌根低剂量组VEGF的表达明显减弱,与环磷酰胺组相比较有显著性差异(P<0.05)。消癌根高剂量组与消癌根低剂剂量组比较,其VEGF的表达亦明显减弱(P<0.05=。(如表3所示)
表3  消癌根对肿瘤组织血管内皮生长因子(VEGF)的影响(x±s)
组别 n 剂量 MDC
  始               末 (g/kg) (条)
阴性对照组 11                    11  — 13.50±1.60
环磷酰胺组 11                    11 20 9.08±3.50
消癌根高剂量组 11                    11 24 4.49±2.18*▲
消癌根低剂量组 11                    11 12 7.51±1.68*△
注:注:与阴性对照组比较:*P<0.05
与消癌根低剂量组比较:▲P<0.05
与环磷酰胺组比较:△P<0.05
三、 消癌根对肿瘤组织增殖细胞核抗原(PCNA)的影响
如表4所示,对于PCNA的表达,消癌根高剂量组和消癌根低剂量组与阴性对照组比较均显著减弱(P<0.01=)。与环磷酰胺组相比较,消癌根高剂量组和消癌根低剂量组PCNA的表达均明显减弱(P<0.01=)。消癌根高剂量组的PCNA的表达明显弱于消癌根低剂量组(P<0.01=)。
表4  消癌根对肿瘤组织细胞增殖核抗原(PCNA)的影响(x±s)
组别 n 剂量 MDC
  始               末 (g/kg) (条)
阴性对照组 11                    11  — 54.73±2.58
环磷酰胺组 11                    11 20 34.01±2.52
消癌根高剂量组 11                    11 24 12.10±1.86*▲
消癌根低剂量组 11                    11 12 22.84±2.26*△
注:注:与阴性对照组比较:*P<0.05
与消癌根低剂量组比较:△P<0.05
与环磷酰胺组比较:▲P<0.05
讨论
由于肿瘤血管生成在肿瘤生成及肿瘤侵袭转移中的重要作用,以及VEGF对肿瘤血管形成的促进作用已在多种肿瘤中得以证实,VEGF可作为抗癌治疗的新靶点,针对VEGF及其受体的抗血管治疗,为肿瘤防治开辟了另一新途径。
本实验以S180荷瘤小鼠为研究对象,分别以环膦酰胺和蒸馏水为阳性对照和阴性对照,来研究消癌根的抑瘤情况及其可能的机理。结果表明消癌根高剂量组抑瘤率达到35.2%,低剂量组亦达到22.1%。说明该药具有一定的抗肿瘤效果。其机理可能是通过抑制VEGF、PCNA的表达来实现的。


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